鸭瘟抗体（DVE Ab）酶联免疫定性
实验原理
本试剂盒应用双抗原夹心法测定标本中鸭瘟抗体（DVE Ab）表达。用纯化的抗原包被微孔
板，制成固相抗原，可与样品中鸭瘟抗体（DVE Ab）相结合，经洗涤除去未结合的抗原和
其他成分后再与 HRP 标记的抗原结合，形成抗原-抗体-酶标抗原复合物，经过*洗涤后
加底物 TMB 显色。TMB 在 HRP 酶的催化下转化成蓝色，并在酸的作用下转化成zui终的黄
色。用酶标仪在 450nm 波长下测定吸光度（OD 值），与 CUTOFF 值相比较，从而判定标本
中鸭瘟抗体（DVE Ab）的存在与否。
鸭瘟抗体（DVE Ab）标本要求
1．标本采集后尽早进行提取，提取按相关文献进行，提取后应尽快进行实验。若不能
马上进行试验，可将标本放于-20℃保存，但应避免反复冻融
2．不能检测含 NaN3 的样品，因 NaN3 抑制辣根过氧化物酶的（HRP）活性。
操作步骤
1.
编号：将样品对应微孔按序编号，每板应设阴性对照 2 孔、阳性对照 2 孔、空白对照 1
孔（空白对照孔不加样品及酶标试剂，其余各步操作相同）
2.
加样：分别在阴、阳性对照孔中加入阴性对照、阳性对照 50µl。然后在待测样品孔先
加样品稀释液 40µl，然后再加待测样品 10µl。加样将样品加于酶标板孔底部，尽量不
触及孔壁，轻轻晃动混匀，
3.
温育：用封板膜封板后置 37℃温育 30 分钟。
4.
配液：将 30 倍浓缩洗涤液用蒸馏水 30 倍稀释后备用
5.
洗涤：小心揭掉封板膜，弃去液体，甩干，每孔加满洗涤液，静置 30 秒后弃去，如此
重复 5 次，拍干。
6.
加酶：每孔加入酶标试剂 50µl，空白孔除外。
7.
温育：操作同 3。
8.
洗涤：操作同 5。
9.
显色：每孔先加入显色剂 A50µl，再加入显色剂 B50µl，轻轻震荡混匀，37℃避光显色
10 分钟.
10. 终止：每孔加终止液 50µl，终止反应（此时蓝色立转）。
11. 测定：以空白空调零，450nm 波长依序测量各孔的吸光度（OD 值）。 测定应在加终止
液后 15 分钟以内进行。
计算和结果判定：
试验有效性：阳性对照孔平均值≥1.00; 阴性对照平均值≤0.10
临界值（CUT OFF）计算：临界值=阴性对照孔平均值+0.15
阴性判定：样品 OD 值< 临界值（CUT OFF）者为鸭瘟抗体（DVE Ab）阴性
阳性判定：样品 OD 值≥ 临界值（CUT OFF）者为鸭瘟抗体（DVE Ab）阳性
。
鸭瘟抗体（DVE Ab）注意事项
1．操作严格按照说明书进行，本试剂不同批号组分不得混用。
2．试剂盒从冷藏环境中取出应在室温平衡 15-30 分钟后方可使用，酶标包被板开封后如未
用完，板条应装入密封袋中保存。
3．浓洗涤液可能会有结晶析出，稀释时可在水浴中加温助溶，洗涤时不影响结果。
4． 封板膜只限一次性使用，以避免交叉污染。
5．底物请避光保存。
6．试验结果判定必须以酶标仪读数为准，使用双波长检测时，参考波长为 630nm
7．所有样品，洗涤液和各种废弃物都应按传染物处理。终止液为 2M 的硫酸，使用时必须
注意安全。